Dental Tribune Italian Edition No. 2, 2017

12 Dental Tribune Italian Edition - Febbraio 2017 Teknoscienza - Endolaser 1. Ruddle C.J. Cleaning and shaping the root canal system. In Cohen S., Burn R.C. eds:Pathwaysofthepulp.8thed.,St.Louis,TheC.V.MosbyCompany,2002,p.231. 2. Peters OA, Schonenberger K, Laib A. Effects of four Ni-Ti preparation techniques on root canal geometry assessed by micro-computed tomography. Int Endod J 2001;34:221-230. 3. Versiani MA, Leoni GB, Steier L, De-Deus G, Tassani S, Pécora JD, de Sousa-Neto MD. Micro-computed tomography study of oval-shaped canals prepared with the self-adjusting file, Reciproc, WaveOne, and ProTaper universal systems. J Endod. 2013 Aug;39(8):1060-6. doi: 10.1016/j.joen.2013.04.009. Epub 2013 May 22. 4. Gergi R, Osta N, Bourbouze G, Zgheib C, Arbab-Chirani R, Naaman A. Effects of three nickel titanium instrument systems on root canal geometry assessed by micro-computed tomography.Int Endod J. 2015 Feb;48(2):162-70. doi: 10.1111/ iej.12296. Epub 2014 May 12. 5. Perrini N. “Storia anatomica del sistema dei canali radicolari” Edizioni SIE. 2010; pagg. 195-196. 6. Berutti E, Marini R, Angeretti A.Penetration ability of different irrigants into dentinal tubules.J Endod. 1997 Dec;23(12):725-7. 7. Ricucci D, Siqueira JF Jr. Fate of the tissue in lateral canals and apical ramifi- cations in response to pathologic conditions and treatment procedures. J Endod 2010;36:1-15. 8. Stojicic S, Zivkovic S, Qian W, Zhang H, Haapasalo M. Tissue dissolution by so- diumhypochlorite:effectofconcentration,temperature,agitation,andsurfactant. J Endod 2010;36:1558-1562. 9. de Gregorio C, Estevez R, Cisneros R, Paranjpe A, Cohenca N. Efficacy of diffe- rent irrigation and activation systems on the penetration of sodium hypochlorite into simulated lateral canals and up to working length: an in vitro study. J Endod 2010;36:1216-1221. 10. OliviG.,DeMoorRJG.,DiVitoE.LaserinEndodonzia:RicercaeApplicazioniCli- niche. Tueor Servizi 2016. Cap. 5. 11. OliviG.,DeMoorRJG.,DiVitoE.LaserinEndodonzia:RicercaeApplicazioniCli- niche. Tueor Servizi 2016. Cap. 6. 12. BlankenJW,VerdaasdonkRM.CavitationasaWorkingMechanismoftheEr,Cr:YSGG Laser in Endodontics: A Visualization Study. J Oral Laser Appl 2007; 7: 97-106. 13. Blanken J, De Moor RJG, Meire M. and Verdaasdonk R. Laser Induced Explosive VaporandCavitationResultinginEffectiveIrrigationoftheRootCanal.Part1:A Visualization Study. Lasers Surg Med 2009;41:514–519. 14. de Groot SD, Verhaagen B, Versluis M, Wu MK, Wesselink PR, van der Sluis LW. Laser-activatedirrigationwithinrootcanals:cleaningefficacyandflowvisualiza- tion. Int Endod J 2009;42:1077-1083. 15. MatsumotoH,YoshimineY,AkamineA.VisualizationofIrrigantFlowandCavita- tionInducedbyEr:YAGLaserwithinaRootCanalModel.JEndod2011;37:839-843. 16. Gregorcic P., Jezersek M., Mozina J. Optodynamic energy-conversion efficiency during an Er:YAG-laser-pulse delivery into a liquid through different fiber-tip geometries. JBO 2012;17,075006. 17. de Groot SD, Verhaagen B, Versluis M, Wu MK, Wesselink PR, van der Sluis LW. Laser-activatedirrigationwithinrootcanals:cleaningefficacyandflowvisualiza- tion. Int Endod J. 2009 Dec;42(12):1077-83. 18. Peeters HH, Suardita K. Efficacy of smear layer removal at the root tip by using ethylenediaminetetraacetic acid and erbium, chromium: yttrium, scandium, gal- lium garnet laser. J Endod. 2011 Nov;37(11):1585-9. doi: 10.1016/j.joen.2011.08.022. Epub 2011 Sep 28. 19. Guidotti R, Merigo E, Fornaini C, Rocca JP, Medioni E, Vescovi P. Er:YAG 2,940- nm laser fiber in endodontic treatment: a help in removing smear layer. Lasers Med Sci. 2012 Dec 5. [Epub ahead of print]. 20. Seet AN, Zilm PS, Gully NJ, Cathro PR. Qualitative comparison of sonic or la- ser energisation of 4% sodium hypochlorite on an Enterococcus faecalis biofilm grown in vitro. Aust Endod J. 2012 Dec;38(3):100-6. [Epub 2012 Jul 16]. 21. LicataME,AlbaneseA,CampisiG,GeraciDM,RussoR,GallinaG.Effectiveness of a new method of disinfecting the root canal, using Er, Cr:YSGG laser to kill En- terococcus faecalis in an infected tooth model. Lasers Med Sci. 2013 Aug 6. [Epub ahead of print]). 22. Macedo RG, Wesselink PR, Zaccheo F, Fanali D, Van Der Sluis LW. Reaction rate of NaOCl in contact with bovine dentine: effect of activation, exposure time, concentration and pH. Int Endod J. 2010 Dec;43(12):1108-15. doi: 10.1111/j.1365- 2591.2010.01785.x. Epub 2010 Aug 31. 23. George R, Walsh LJ. Apical extrusion of root canal irrigants when using Er:YAG and Er,Cr:YSGG lasers with optical fibers: an in vitro dye study. J Endod. 2008 Jun;34(6):706-8. doi: 10.1016/j.joen.2008.03.003. Epub 2008 Apr 11. 24. DeMoorR.,MeireM.(2014)Laseractivatedirrigation.Part2:Doesthepositionof the fiber matters? Laser Laser 2014;3:12,14,16-18. 25. Majaron B., Lukac M., Sustercic D., Funduk N., Skaleric U. Threshold and effi- ciencyanalysisinEr:YAGlaserablationofharddentaltissue.Laserapplicationsin medicine and dentistry. Proceedings of the SPIE, vol. 2922) 1996, str. 233-242. 26. Lin S, Liu Q., Peng Q., Lin M., Zhan Z. and Zhang X. The ablation threshold of Er:YAG laser and Er,Cr:YSGG laser in dental dentin. Scientific Research and Essays Vol. 5(16), pp. 2128-2135. 27. Koch JD, Jaramillo DE, DiVito E, Peters OA. Irrigant flow during photon-induced photoacousticstreaming(PIPS)usingParticleImageVelocimetry(PIV).ClinOral Investig. 2016 Mar;20(2):381-6. doi: 10.1007/s00784-015-1562-9. Epub 2015 Aug 26. 28. OliviG.,DeMoorRJG.,DiVitoE.LaserinEndodonzia:RicercaeApplicazioniCli- niche. Tueor Servizi 2016. Cap. 8. 29. DiVito E, Peters OA, Olivi G. Effectiveness of the erbium:YAG laser and new de- sign radial and stripped tips in removing the smear layer after root canal instru- mentation. Lasers Med Sci. 2012 Mar;27(2):273-80. Epub 2010 Dec 1. 30. Arslan H, Capar ID, Saygili G, Gok T, Akcay M. Effect of photon-initiated photoa- coustic streaming on removal of apically placed dentinal debris. Int Endod J. 2014 Jan 23. doi: 10.1111/iej.12251. [Epub ahead of print]. 31. Akyuz Ekim SN, Erdemir A. Comparison of different irrigation activation techniques on smear layer removal: an in vitro study. Microsc Res Tech. 2015 Mar;78(3):230-9. doi: 10.1002/jemt.22466. 32. ArslanD,GuneserMB,DincerAN,KustarciA,ErK,SisoSH.ComparisonofSme- arLayerRemovalAbilityofQMixwithDifferentActivationTechniques.JEndod. 2016 Aug;42(8):1279-85. doi: 10.1016/j.joen.2016.04.022. 33. Keles A, Kamalak A, Keskin C, Akçay M, Uzun I. The efficacy of laser, ultrasound and self-adjustable file in removing smear layer debris from oval root canals fol- lowing retreatment: A scanning electron microscopy study. Aust Endod J. 2016 Dec;42(3):104-111. doi: 10.1111/aej.12145. 34. PetersOA,BardsleyS,FongJ,PandherG,DivitoE.Disinfectionofrootcanalswithpho- ton-initiatedphotoacousticstreaming.JEndod.2011Jul;37(7):1008-12.Epub2011May7. 35. Jaramillo D.E., Aprecio R.M., Angelov N., DiVito E., McClammy T.V. Efficacy of photon induced photoacoustic streaming (PIPS) on root canals infected with En- terococcus faecalis: A pilot study. Endodontic practice. 2012. Vol 5 N3; 28-32. 36. Ordinola-Zapata R, Bramante CM, Aprecio RM, Handysides R, Jaramillo DE. 37. Biofilmremovalby6%sodiumhypochloriteactivatedbydifferentirrigationtech- niques. Int Endod J. 2013 Oct 9. doi: 10.1111/iej.12202. [Epub ahead of print]. 38. Olivi G, DiVito E, Peters O, Kaitsas V, Angiero F, Signore A, Benedicenti S. Di- sinfection efficacy of photon-induced photoacoustic streaming on root canals infected with Enterococcus faecalis: an ex vivo study. J Am Dent Assoc. 2014 Aug;145(8):843-8. doi: 10.14219/jada.2014.46. 39. Mathew J, Emil J, Paulaian B, John B, Raja J, Mathew J. Viability and antibacte- rial efficacy of four root canal disinfection techniques evaluated using confocal la- ser scanning microscopy. J Conserv Dent. 2014 Sep;17(5):444-8. doi: 10.4103/0972- 0707.139833. 40. Balic M, Lucic R, Mehadžic K, Bago I, Anic I, Jakovljevic S, Plecko V. The efficacy of photon-initiated photoacoustic streaming and sonic-activated irrigation com- bined with QMiX solution or sodium hypochlorite against intracanal E. faecalis biofilm. Lasers Med Sci. 2016 Feb;31(2):335-42. doi: 10.1007/s10103-015-1864-9. bibliografia < < pagina 11 Le problematiche di questa tecnica sono relative alla diversa capacità di diffusione della luce di diverse lun- ghezze d’onda, alla disomogenea de- posizione di energia lungo le pareti canalaridallaporzioneapicaleaquella coronale (fluence = J/cm2 ), agli effetti termici collaterali non controllabili che avvengono durante l’irradiazione (scalinature e perforazioni per i laser medium infrared e hot spot con mel- ting e bolle di ricristallizzazione per i laser near infrared), quando la fibra la- ser entra in diretto contatto con le pa- reticanalari.Perquestononriteniamo utileilpropostomovimentoelicoidale in retrazione della fibra durante l’ir- radiazione. Come per le tecniche di irrigazione anche per la tecnica laser la fibra ha difficoltà a essere inserita in canali stretti e curvi, senza forzare e prendere intimo contatto con la den- tina parietale10 . La tecnica di deconta- minazione foto attivata (aPAD e PDT) è stata proposta in endodonzia per ovviare agli effetti termici del laser. Questa tecnica, oltre alle problemati- chetecnichediinserimentodellafibra laserneicanalicurviestretti,presenta problemirelativiallalimitatapenetra- zione nei tubuli dentinali delle solu- zioni antibatteriche fotosensibili e alla necessità della presenza di ossigeno a livello tessutale perché la reazione chimica di produzione di radicali at- tivi possa avvenire. Anche le tecniche laser (CLE e aPAD) vengono eseguite a preparazione canalare ultimata, rap- presentando l’ultima fase della tera- pia, sommandosi quindi all’irrigazio- ne convenzionale utilizzata durante la terapia11 . Sistemi di irrigazione laser attivata Per attivazione laser intendiamo qui “agitazione” e per questo solo i la- ser medium infrared della famiglia erbium (2780 nm e 2940 nm) sono utilizzabili per il loro elevato assorbi- mento in acqua (componente princi- pale delle soluzioni irriganti). La punta laser è inserita nel canale riempito di irrigante e viene qui at- tivata. Le pulsazioni dei laser erbium (di durata breve da 100 a 300 mi- crosecondi), riscaldano le soluzioni irriganti sino al punto di ebollizione, creando il fenomeno di esplosione- implosione di bolle di vapore acqueo, che producono la successiva cavita- zione nella soluzione irrigante all’in- terno del canale12-16 (Fig. 1). A seconda dei protocolli proposti, la punta può essere tenuta in movimento e ritirata lentamente verso la camera pulpare, o può essere utilizzata ferma o con piccoli movimenti nel terzo apicale o terzo medio del canale17-21 . La pro- duzione del fenomeno di cavitazione all’internodelcanaleporta,aseconda della soluzione utilizzata, a una au- mentata detersione e decontamina- zione della porzione canalare irrigata. Nel caso dell’ipoclorito di sodio, l’atti- vazione laser oltre a migliorare la di- stribuzione dell’irrigante nel sistema endodontico, ne aumenta la reattività e l’efficacia (Macedo et al., 2010), con maggiore velocità di produzione di cloro libero (1 minuto di attivazione laser equivale a un tempo di 3 minu- ti di non attivazione22 ). Oltre a questi eventi positivi ricercati, va anche con- siderato che: – più la fibra è posizionata vicina all’apice, maggiore è la pressione in quest’area, con aumentata pos- sibilità di estrusione15,23 ; – più la fibra è posizionata vicino all’apice, maggiore deve essere il diametro della preparazione ca- nalare; – quando la fibra è posizionata nel canale, viene irrigata efficacemen- te solo la parte a valle della fibra; – quando la fibra è posizionata nel canale e l’energia applicata è ele- vata, la fibra stessa crea ostacolo all’apporto esterno di irrigante, con conseguente rapido consumo del liquido presente a valle (per vaporizzazione/esplosione); come conseguenza si avrà irrigazione inefficace (per mancanza di irri- gante)coninvolontariairradiazio- necanalareasecconeiprotocollia irrigazione intermittente24 . Tecnica PIPSTM Differentemente dalle altre tecniche di attivazione laser degli irriganti, PIPSTM introduce un nuovo concetto di “cleaning and shaping” in endo- donzia. PIPSTM si basa sul concetto “mininvasivo” o “biomimetico” che riduce al minimo l’uso della stru- mentazione canalare, ottimizzando la conservazione della struttura den- tinale, senza compromettere la capa- cità di raggiungere efficacemente con l’irrigazione attivata dal laser tutte le zone del sistema endodontico (Fig. 2). L’efficacia di PIPS è basata sull’avan- zata tecnologia utilizzata (impulso digitale ultracorto) che ha permesso di variare alcuni passaggi dei diversi protocolli clinici utilizzati in endo- donzia laser e non, e precisamente: – utilizzo di una punta laser con disegno specifico che ottimizza l’emissione tridimensionale di energia (Fig. 3); – utilizzo di bassa energia (20 mJ o meno),sub-ablativaperladentina, che rende trascurabile l’eventuale interazione sulla dentina25,26 ; – emissione di impulso di durata molto breve (50 microsecondi) che produceun’elevatapotenzadipicco anche a bassa energia (400 W a 20 mJe200Wa10mJ)erendel’attiva- zionedelliquidomoltoefficace; – l’efficace attivazione del liquido produce movimento di fluido an- che a distanza dal punto di attiva- zione, con facile e sicuro posizio- namento della punta in camera pulpare e non nel canale27 ; – lamancanzadinecessitàdiarriva- re con file, fibre, aghi, cannule per l’attivazione del liquido irrigante al terzo apicale, permette di ridur- re il diametro della preparazione canalare al minimo richiesto. > > pagina 13 Fig. 4 - Rappresentazione schematica del protocollo finale di detersione e disinfe- zione attivata da PIPS. Fig. 2 - Diversa posizione della fibra laser nel canale per le tecniche laser convenzio- nale (CLE) e la tecnica di attivazione laser degli irriganti (LAI). La tecnica PIPS prevede il posizionamento della punta in camera pulpare. Fig. 3 - Manipolo laser (H14, LightWalker, Fotona) con punte PIPS da 600 e 400 micron.

Dental Tribune Italian Edition No. 2, 2017

Sito